如何正確使用淋巴細胞分離液?
正確使用淋巴細胞分離液是確保實驗結果準確性和可重復性的關鍵。
在開始之前,確認所有材料和試劑均已準備完畢,包括抗凝處理的血液樣本、
淋巴細胞分離液、離心管、生理鹽水或緩沖液、離心機等。
1、將抗凝處理后的血液用生理鹽水或緩沖液稀釋,比例通常為1:1。然后,在離心管中先加入特定量的淋巴細胞分離液,再緩慢地將稀釋后的血液疊加在分離液之上,注意不要攪動界面。
2、將離心管放入離心機中進行離心。根據細胞密度,設置適當的離心速度和時間,通常為400至600g,持續20至30分鐘。
3、離心后,小心地取出離心管,觀察血液層和分離液層之間形成的白膜層,即為淋巴細胞層。使用吸管或移液器小心地吸取這一層的細胞,避免擾動其他層。
4、將收集到的淋巴細胞轉移到新的試管中,加入適量的生理鹽水或緩沖液進行清洗,然后再次離心以洗滌細胞。移除上清液,剩下的淋巴細胞即可用于后續實驗或分析。
整個過程中,無菌技術和溫度控制很重要。操作應在無菌條件下進行,所有試劑和樣本應保持在4°C以保持細胞活性。
通過遵循這些步驟和注意事項,可以有效地使用淋巴細胞分離液,確保獲得高質量的淋巴細胞樣本,為實驗研究或臨床診斷提供可靠數據。